第３８卷第６期 海 洋 渔Ｍ ＩｉⅡｅ 业 Ｖｏ１．３８，Ｎｏ．６ ２０１６年１１月 Ｆｉｓｈｅｒｉｅｓ ＮＯＶ．，２０１６ 文章编号：１００４—２４９０（２０１６）０６—０６６３—０７ 产麻痹性贝毒塔玛亚历山大藻共培养茵群的 物种多样性研究 刘巧红 ，苑丽东 ，田晓清 ，马丽艳 ，周宏农。， 樊成奇 ，杨宪时 ，杨（１．中ＮＩ水产科学研究院东海水产研究所，上海３．台湾大学渔业科学研究所，中国台北桥 ，张晓玲 ２０００９０；２．上海海洋大学，上海２０１３０６； １０６１７；４．俄勒冈州立大学微生物学系，科瓦里斯，俄勒冈９７３３３） 摘要：产毒赤潮藻与其共生菌的互作关系是揭示麻痹性贝毒（ＰＳＰ）产生机制的关键，而其共培养菌群的分 离及其多样性解析是开展此研究的必要前提。塔玛亚历山大藻（Ａｌｅｘａｎｄｒｉｕｍ ｔａｍａｒｅｎｓｅ）是典型产ＰＳＰ赤潮原 因甲藻，为揭示其共培养菌群的物种多样性信息，本文通过免培养海洋微生物高通量测序技术，解析了东海塔 玛亚历山大藻（ａｔ３＃）共培养菌群的种类、丰度及多样性信息。结果表明，其共培养菌群共有８７个种与已有数 据库匹配，此外尚有５％的未知种。其包含５７个属，其中优势菌属５个，分别为Ｒｈｏｄｏｂａｃｔｅｒａｃｅａｅ、 Ｍａｒｉｎｏｂａｃｔｅｒ、Ｍｅｔｈｙｌｏｐｈａｇａ、Ｎｉｔｒａｔｉｒｅｄｕｃｔｏｒ及Ｐｈｙｃｉｓｐｈａｅｒａ。研究表明东海产ＰＳＰ塔玛亚历山大藻（ａｔ３＃）含有物 种丰富的共培养菌群，且具有发掘海洋特殊生境微生物新种属的良好潜力。 关键词：塔玛亚历山大藻；麻痹性贝毒；共培养菌群；物种多样性 中图分类号：Ｑ ９４９．３ 文献标识码：Ａ 有害赤潮是受到全球关注的重大环境问题 及海洋生态灾害¨ 。近年来，我国海洋环境污 通过免培养微生物高通量测序技术，首次解析了 其共培养菌群的种类、丰度及多样性信息。此研 究结果可为后续开展藻菌关系等研究提供必要 染日趋加重，导致赤潮频发，给我国生态环境、海 产养殖及渔业、水产品质量安全等多方面带来巨 的生物学背景信息支持。 大威胁，且不断引发人体中毒乃至死亡事件发 生 。而目前关于麻痹性贝毒（ＰＳＰ）的来源问 题仍悬而未决，而甲藻共生菌产毒假说认为，赤 潮藻内共生菌才是ＰＳＰ的主要生产者 Ｊ。该 学说得到了日益增加的赤潮藻产毒共生菌数量 １材料与方法 １．１实验材料 产ＰＳＰ塔玛亚历山大藻（Ａｌｅｘａｎｄｒｉｕｍ ｔａｍａｒｅｎｓｅ，编号ａｔ３＃），由台湾大学渔业科学研究 所周宏农教授课题组提供。分离自台湾屏东市 东港水产养殖池中，保存于本研究室。 藻培养基：改良ｆ／２培养基、细菌分离培养基 为海洋Ｚｏｂｅｌｌ ２２１６培养基Ｈ 。细菌鉴定生理生 的实验证据支持 。产毒赤潮藻与其共生菌 的关系是揭示ＰＳＰ产生机制的关键，而其共培养 菌群的分离及其多样性分析是开展此研究的必 要前提。产ＰＳＰ塔玛亚历山大藻（Ａｌｅｘａｎｄｒｉｕｍ ｔａｍａｒｅｎｓｅ）是我国典型赤潮甲藻 ，但对其共培 化测试所需培养基，参照文献［１５］配制；细菌基 因组ＤＮＡ提取、ＰＣＲ扩增试剂盒均购自荷兰 养菌群的物种多样性背景信息尚知之甚少。本 文以东海塔玛亚历山大藻株（ａｔ３＃）为研究材料， 收稿日期：２０１６—０２—１６ ＱＩＡＧＥＮ公司；ＰＣＲ引物由上海生工合成；其它化 基金项目：国家自然科学基金（４１２０６０９３）；中央公益性科研院所基本科研业务费专项（２０１２Ｔ０８） 作者简介：刘巧红（１９９０一），硕士研究生，研究方向：海洋微生物及海洋毒素。 通讯作者：张晓玲，副研究员。Ｅ－ｍａｉｌ：ｎｙｙｑｘｌ＠１２６．ｃｏｒｎ 海洋渔业 ２０１６正 学试剂均为分析纯，购自上海国药集团。实验用 纯水制自美国Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ公司Ｍｉｌｌｉ－Ｑ纯水系统。 １．２实验方法 １．２．４数据分析 挑取９７％相似性对非重复序列进行分类单 元（ＯＴＵ）聚类。得到ＯＴＵ代表序列，选出ＯＴＵ 代表序列相似性９７％以上序列，生成ＯＴＵ表格。 采用ＲＤＰ ｃｌａｓｓｉｉｆｅｒ贝叶斯算法对其进行分类学 分析，在各分类水平上统计样品微生物群落组 成。比对数据库１６Ｓ细菌数据库：Ｓｉｌｖａ、ＲＤＰ、 Ｇｒｅｅｎｇｅｎｅ。软件及计算方法：ＱＩＩＭＥ及ＲＤＰ １．２．１藻培养 使用改良ｆ／２培养基，光照强度：４ ５００～ ５ ０００ ｌｘ，光照周期：１２Ｌ／１２Ｄ，培养温度：２２℃。 使用人工海水配制培养基。 １．２．２高通量测序 收集对数生长期的藻培养物５０ ｍＬ，于无菌 离心管内，静止至藻细胞沉降后，吸弃上清液，细 胞沉淀加入３０ ｍＬ ＰＢＳ缓冲液（ｐＨ ７．２），振荡均 匀后离心（４℃，４ ０００ ｒｐｍ，２０ ｍｉｎ）。重复洗涤３ 次。所得细胞沉淀通过ＤＮＡ提取试剂盒提取总 ＤＮＡ，ＰＣＲ使用细菌通用引物Ｖ３＋Ｖ４区３３８Ｆ一 Ｃｌａｓｓｉｆｉｅｒ平台，置信度阈值０．７。获得共培养菌 群落物种丰度（Ｃｈａｏ及Ａｃｅ指数）、多样性（Ａｌｐｈａ 多样性，Ｓｈａｎｎｏｎ及Ｓｉｍｐｓｏｎ指数）及样品间群落 结构差数据¨ Ｊ。 ２结果与分析 ２．１样品质量控制 ８０６Ｒ，其中上游引物３３８Ｆ：５ 一ＧＧＡＣＴＡ ＣＨＶＧＧ ＣＴＡＡＴ一３ ；下游引物８０６Ｒ：５ 一 ＧＧＡＣＴＡＣＨＶＧＧＧＴＷＴＣＴＡＡＴ一３ ，进行ＰＣＲ扩 采用免培养环境微生物高通量测序技术分 析了塔玛亚历山大藻（ａｔ３＃）共培养菌群多样性。 增。通过Ｉｌｌｕｍｉｎａ ＭｉＳｅｑ平台进行高通量测序。 １．２．３数据处理 首先对测序样品质量进行了分析，其质量控制分 所得端序列数据，根据ＰＥ ｒｅａｄｓ问ｏｖｅｒｌａｐ关 系，将成对的ｒｅａｄｓ拼接成一条序列，同时对ｒｅａｄｓ 质量和ｍｅｒｇｅ效果进行质控过滤，根据序列首尾 析结果如表１所示。其修剪（ｔｒｉｍｍｅｄ）序列长度 ３０１～４００ ｂｐ比例高于９９．９８％，综合以上数据， 说明高通量测序样品数据可靠。 ２．２样品多样性指数 两端的ｂａｒｃｏｄｅ和引物序列区分样品得到有效序 列，并校正序列方向。过滤ｒｅａｄ尾部质量值２０ 以下碱基，设置５０ ｂｐ窗口，若窗口内平均质量值 低于２０，从窗口开始截去后端碱基，过滤质控后 ５Ｏ ｂｐ以下ｒｅａｄ。根据ＰＥ ｒｅａｄｓ间ｏｖｅｒｌａｐ关系， 塔玛亚历山大藻（ａｔ３＃）共培养菌群样品的多 样性稀释性曲线分析采用序列随机抽样法，以抽 到测序序列数与其代表ＯＴＵ数目构建ｒａｒｅｆａｃｔｉｏｎ 曲线（图１）。结果表明样品高通量测序深度足 够。样品多样性指数，包括菌群丰度（ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ ｒｉｃｈｎｅｓｓ）指数（Ｃｈａｏ、Ａｃｅ）、菌群多样性 （ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ）指数（Ｓｈａｎｎｏｎ、Ｓｉｍｐｓｏｎ）及 将成对ｒｅａｄｓ拼接成一条序列，最小ｏｖｅｒｌａｐ长度 为１０ ｂｐ，拼接序列ｏｖｅｒｌａｐ区允许最大错配比率 ０．２，筛选不符合序列，根据序列首尾两端ｂａｒｃｏｄｅ 与引物区分样品，并调整序列方向，ｂａｒｃｏｄｅ允许 错配数０，最大引物错配数２。 测序深度指数（ｃｏｖｅｒａｇｅ）结果如表２所示，样品 Ｓｈａｎｎｏｎ．Ｗｉｅｎｅｒ曲线如图１所示，以上结果可看 出所分析藻样共培养菌群的物种多样性较高。 表１ 高通置测序样品质量控制数据 Ｔａｂ．１ Ｑｕａｌｉｔｙ ｃｏｎｔｒｏｌ ｄａｔａ ｏｆ ｔｈｅ ｈｉｇｈ－ｔｈｒｏｕｇｈｐｕｔ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ｓａｍｐｌｅ 表２高通量测序样品多样性指数数据 Ｔａｂ．２ Ａｌｐｈａ－ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｄａｔａ ｏｆ ｔｈｅ ｈｉｉｇｈ・ｔｈｒｏｕｇｈｐｕｔ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ｓａｍｐｌｅ 分类单元 ＯＴＵ ｔＯ１ Ａｃｅ指数 Ａｃｅ ｉｎｄｅｘ １０２ Ｃｈａｏ指数 Ｃｈａｏ ｉｎｄｅｘ １０２ Ｓｈａｎｎｏｎ指数 Ｓｈａｎｎｏｎ ｉｎｄｅｘ ２．８７ Ｓｉｍｐｓｏｎ指数 Ｓｉｍｐｓｏｎ ｉｎｄｅｘ ０．０９１ １ 覆盖度 Ｃｏｖｅｒａｇｅ 第６期 刘巧红等：产麻痹性贝毒塔玛亚历山大藻共培养菌群的物种多样性研究 Ｉ１０－【ｐ０日Ｈ０ 日 ¨０ Ｔｌ∞时０目目０－【 ０由Ｈ０ 日 析¨ 。表３表示的是塔玛亚历山大藻（ａｔ３＃）共 培养菌群样品ＯＴＵ代表性序列相似性在９７％以 上的序列数统计表，ＯＴＵ聚类得到样品中各个 ＯＴＵ丰度及其在样品中序列数。 ２．４分类学分析 对通过高通量测序所获得的藻共培养菌群 样品数据，采用ＲＤＰ ｃｌａｓｓｉｉｆｅｒ贝叶斯算法对９７％ 相似水平ＯＴＵ代表序列进行分类学分析，在各分 类水平上统计样品微生物群落组成。结果表明， 种水平比对共有８７个种与已有数据库匹配（图 图１高通量测序样品Ｒａｒｅｆａｃｔｉｏｎ（ａ）与 Ｓｈａｎｎｏｎ・Ｗｉｅｎｅｒ（ｂ）曲线图 Ｆｉｇ．１ Ｔｈｅ Ｒａｒｅｆａｃｔｉｏｎ（ａ）ａｎｄ Ｓｈａｎｎｏｎ－Ｗｉｅｎｅｒ ｃｕｒｖｅｓ（ｂ）ｏｆ ｔｈｅ ｈｉｇｈ－ｔｈｒｏｕｇｈｐｕｔ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ｓａｍｐｌｅ ２），此外含有５％未知种。属水平比对共含５７个 属（图３），其中优势菌属５个，分别为 Ｒｈｏｄｏｂａｃｔｅｒａｃｅａｅ、 Ｍａｒｉｎｏｂａｃｔｅｒ Ｍｅｔｈｙｌｏｐｈａｇａ、 Ｎｉｔｒａｔｉｒｅｄｕｃｔｏｒ及Ｐｈｙｃｉｓｐｈａｅｒａ。结果表明产ＰＳＰ ２．３ ｏＴＵ分布统计 东海塔玛亚历山大藻（ａｔ３＃）含有丰富的共培养菌 群，且具有发现海洋特殊生境微生物新种属的良 好潜力。 ＯＴＵ是系统发生学或群体遗传学研究中设 置的分类单元归类操作标志，以便进行比对分 表３高通量测序样品的ＯＴＵ及其序列数信息 Ｔａｂ．３ ＯＴＵ ａｎｄ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｎｕｍｂｅｒ ｄａｔａ ｏｆ ｈｅ ｈｉｇｈ－ｔｈｒｏｕｇｈｐｕｔ ｓｅｑｕｅｎｃｉｔｎｇ ｓａｍｐｌｅ ６６６ 海洋渔业 ２０１６年 巷 ｇ ’ｒ 皇 日Ｓ毒 Ｐａ ８Ｉ＿Ｉ∞ｒＪ 目 ■８％ 翟 ｒＥ青 目ｄｎ暑 置总８ 冒 ∞ 目 Ｉ霉 器ｐｌ 譬，口甚ｑ 量 ３童 ｇ ｐａ ｇ 呵姗董％ ｇ耸 ８ ｐａ鲁 目Ｈ 壹８ 昱 ｐⅡ 时州馨 ∞口 ８吕萤ｑ ｐａ ＿｝∞∞Ｂｌ§∞ §童 喝童ｇｑ０８２ｇ § 量童量ａｐ ２∞ 童Ｐ日皇 §％８ａ暑 ｉ一 ｐａ ．｝§ ８§皇 皇ｌｌ 曼 Ｓ譬 譬 ≈一 岳 最一量害 曼 缸 喜∞ 譬 ８ 量骂叠鱼 望匹譬量皇 毒§ 目 譬 誉８ ．ｄｓ％ ｇ ｇ ｄＨ目 趸胃 盘 ８ｑ０Ⅱ 薯 ｝ｑ８ ｂ ｌｌｉＩⅢｉＩｌＩｌＩ㈣ ｌｌｌＩＩＩｌｌＩｌｌＩｌ㈣ ０Ｉｌｌ ｌｌｌ ｌ翻［ＨｌｌＵｌＩＨＩＨＨ 川 ，∞ ８ ０口 基孳Ｐａ ８ §｝镕 Ｉ盛 ＾Ｉ目翻 翻 Ｐａ ８ § ＿目 目嗣 童ｇ 昱 皇 § ８８８量芝 ０ 跪雌Ｈ§∞ ∞『。 镪 ｒ０ ａｐ占 ｐａ ％ ８ ％日『姗 ＥＲ§美∞Ｉｓ甚 叠ｌＩｌ葛∞∞Ｂｌ窖罩∞ 警 ｓｌ０茸 墨置呈８ＰＩ爱 ％ ≈盘 器 §磐 ｌ盘口专 毒 芑雯 盘 量窭《毒 ｐａ ｉ ＿＿§ ＨｌＪ｜Ｓ Ⅳ｜Ｈｓ Ｓ鱼 鲁 缸 譬山∞ 量瓷ｐａ ， 目 §§ ９巨∞ ３曼量；Ｈｎ ｐ。自ａ ｉ《 童旨 ．导盈已譬， 司 茸目 目Ａｌ《 目百∞ 舀 叠暑警委 Ｐｌ ｇ ０５～ 壹ｉｇ６６Ｄ ｈ 目『。目喜舢『目 量８ ８ ８目 ８ 图２塔玛亚历山大藻（ａｔ３＃）共培养菌群的物种种类及其丰度图 量＾目 ｄ０ 皇童ｍ ｉ ⅡａＰ鲁 Ｆｉｇ．２ Ｓｐｅｃｉｅｓ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ ｔｈｅ ＣＯ－ｃｕｌｔｕｒｅｄ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ ｏｆ Ａ．ｔａｍａｒｅｎｓｅ（ａｔ３＃） ８ ８ ２ａ∞目 ０．０４ Ｏ．０２ Ｏ 量 量 妻耋 耋耋 童 薹量萋量 耋耋 量耋 量薹耋 耋耋量耋量萋耋 蓍壹茎 墨量 耋望 壹 耋 耋 图３塔玛亚历山大藻（ａｔ３＃）共培养菌群的属水平分布图 Ｍｉｃｒｏｂｉａｌ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ ｏｎ ｇｅｎｕｓ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｔｈｅ ＣＯ－ｃｕｌｔｕｒｅｄ ｂａｃｔｅｒｉｌ ｃｏｍｍｕｎｉａｔｙ ｏｆ Ａ． 第６期 刘巧红等：产麻痹性贝毒塔玛亚历山大藻共培养菌群的物种多样性研究 ｔｈｅ ｈａｒｍｆｕｌ ｒｅｄ ｔｉｄｅ［Ｊ］．Ｎａｔｕｒｅ，１９９７（３８８）：５１３ —３讨论 目前，ＰＳＰ究竟是由赤潮藻、或其共生菌单独 ５ｌ４． ［２］ ＺＯＵ Ｃ，ＹＥ ＲＭ，ＺＨＥＮＧ ＪＷ，ｅｔ ａ１．Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｐｈｙｌｏｇｅｎｙ ａｎｄ ＰＳＰ ｔｏｘｉｎ ｐｒｏｆｉｌｅ ｏｆ ｔｈｅ Ａｌｅｘａｎｄｒｉｕｍ 产生，或藻菌二者互作共同产生，尚无定论。两 种观点争辩的最终解决，需在赤潮藻及其共生菌 两方面开展更为深入的系统研究，以找寻并积累 更多实验证据 卜驯。而海洋共生菌在长期自然 进化过程中，与其宿主形成了复杂的共生体系， 二者之间既存在代谢产物的相互交流，亦有遗传 物质在不同物种之间的基因水平转移（ｈｏｒｉｚｏｎｔａｌ ｇｅｎｅ ｔｒａｎｓｆｅｒ）及基因融合（ｇｅｎｅ ｆｕｓｉｏｎ） 。因 此，赤潮藻与其共生菌互作关系是揭示ＰＳＰ产生 机制的关键 。－２０］。 塔玛亚历山大藻是世界范围的产ＰＳＰ赤潮 甲藻，其适应能力强、生存范围广。在我国北至 胶州湾，南至厦门海域、大鹏湾均有分布，并有较 高赤潮发生频率，是我国各海区典型赤潮原因甲 藻，亦是赤潮生物学的研究热点及模式生物之 一，但其共培养菌群的多样性研究尚无报道。而 海洋环境中高达９９％的微生物为活的不可培养 状态（ｖｉａｂｌｅ ｂｕｔ ｎｏｎ－ｃｕｌｔｉｖａｂｌｅ ｓｔａｔｅ），这一特殊类 群微生物对于宿主赤潮甲藻的生长及毒素生物 合成的影响如何？亦应引起更多关注 卜 。而 通过免培养（ｃｕｌｔｕｒｅ－ｉｎｄｅｐｅｎｄｅｎｔ）高通量测序技 术解析其共培养菌群的物种多样性信息，可为其 分离培养策略的设计与优化、提高其共培养菌群 的可培养性提供有益科学参考 。本研究利用 高通量测序技术，首次阐明了东海塔玛亚历山大 藻内共培养菌群的种类、丰度及多样性信息。结 果表明，其具有丰富的共培养菌群，且蕴含发掘 特殊海洋生境微生物新种属的良好潜力。而本 课题组的已有研究发现，通过微生物纯培养所获 得的可培养共培养菌群的种属数量远低于高通 量测序所分析结果 ，印证了若要揭示产毒赤潮 藻共培养菌物种多样性真实全貌，尚需在其关键 研究瓶颈技术——提高海洋微生物特别是共生 菌可培养性（ｃｕｌｔｉｖａｂｉｌｉｔｙ）方面取得突破。基于 此，产毒赤潮藻内共培养菌的系统分离及多样性 研究仍将是今后藻菌关系相关研究的重要方向 之一。 参考文献： ［１］ ＫＲＥＵＤＥＲ Ｃ，ＭＡＺＥＴ Ｊ，ＢＯＳＳＡＲＴ Ｇ，Ｔｕｒｎｉｎｇ ｂａｃｋ ｔａｍａｒｅｎｓｅ ｓｐｅｃｉｅｓ ｃｏｍｐｌｅｘ ａｌｏｎｇ ｔｈｅ ｃｏａｓｔ ｏｆ Ｃｈｉｎａ ［Ｊ］．Ｍａｒｉｎｅ Ｐｏｌｌｕｔｉｏｎ Ｂｕｌｌｅｔｉｎ，２０１４，８９（１—２）： ２０９—２１９． ［３］ ＫＯＤＡＭＡ Ｍ．Ｐａｒａｌｙｔｉｃ ｓｈｅｌｌｉｆｓｈ ｐｏｉｓｏｎｉｎｇ ｔｏｘｉｎｓ： ｂｉｏｃｈｅｍｉｓ—ｔｒｙ ａｎｄ ｏｒｉｇｉｎ［Ｊ］．Ａｑｕａ—Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ Ｍｏｎｏｇｒａｐｈｓ，２０１０，３（１）：１—３８． ［４］ ＧＡＬＬＡＣＨＥＲ Ｓ．Ｂａｃｔｅｒｉａ ａｎｄ Ｐａｒａｌｙｔｉｃ Ｓｈｅｌｌｆｉｓｈ Ｔｏｘｉｎｓ［Ｊ］．Ｐｒｏｔｉｓｔ，１９９９，（１５０）：２４５—２５５． ［５］ ＥＴＨＥＲＩＤＧＥ Ｓ Ｍ．ＰａｒＭ￣ｉｃ ｓｈｅｌｌｉｆｓｈ ｐｏｉｓｏｎｉｎｇ： Ｓｅａｆｏｏｄ ｓａｆｅｔｙ ａｎｄ ｈｕｍａｎ ｈｅａｌｔｈ ｐｅｒｓｐｅｃｔｉｖｅｓ［Ｊ］． Ｔｏｘｉｃｏｎ，２０１０，５６（２）：１０８—１２２． ［６］ＤＡＶＩＤ Ｈ Ｇ，ＬＬＥＷＥＬＬＹＮ Ｌ Ｅ，ＮＥＧＲＩ Ａ Ｐ，ｅｔ ａ１．Ｐｈｙｌｏ—ｇｅｎｅｔｉｃ ａｎｄ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ ｔｈｅ ｃｕｌｔｉｖａｂｌｅ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｐａｒａｌｙｔｉｃ ｓｈｅｌｌｆｉｓｈ ｐｏｉｓｏｎｉｎｇ ｄｉｎｏｆｌａｇｅｌｌａｔｅ Ｇｙｍｎｏｄｉｎｉｕｍ ｃａｔｅｎａｔｕｍ［Ｊ］．ＦＥＭＳ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ Ｅｃｏｌｏｇｙ，２００４（４７）：３４５—３５７． ［７］ ＭＡＳ６ Ｍ，ＧＡＲＣＩ￣Ｓ Ｅ．Ｈａｒｍｆｕｌ ｍｉｃｒｏａｌｇａｅ ｂｌｏｏｍｓ （ＨＡＢ）：Ｐｒｏｂｌｅｍａｔｉｃ ａｎｄ ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ ｔｈａｔ ｉｎｄｕｃｅ ｔｈｅｍ［Ｊ］．Ｍａｒｉｎｅ Ｐｏｌｌｕｔｉｏｎ Ｂｕｌｌｅｔｉｎ，２００６，５３（１０ —１２）：６２０—６３０． ［８］ ＷＩＥＳＥ Ｍ，Ｄ ＡＧＯＳＴＩＮＯ Ｐ Ｍ，ＭＩＨＡＬＩ Ｔ Ｋ，ｅｔ ａ１．Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｃ ａｌｋａｌｏｉｄｓ：Ｓａｘｉｔｏｘｉｎ ａｎｄ ｉｔｓ ａｎａｌｏｇｓ ［Ｊ］．Ｍａｒｉｎｅ Ｄｒｕｇｓ，２０１０，８（７）：２１８５—２２１１． ［９］ ＧＥＯＲＧＩＮＡ Ｌ．ＥＬＩＺＡＢＥＴＨ Ａ．ＭＩＣＨＡＥＬ Ｓ，ｅｔ ａ１． Ｃｈａ—ｒａｃｔｅｒｉｓａｔｉｏｎ ｏｆ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｉｅｓ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｔｏｘｉｃ ａｎｄ ｎｏｎ—ｔｏｘｉｃ ｄｉｎｏｆｌａｇｅｌｌａｔｅｓ： Ａｌｅｘａｎｄｒｉｕｍ ｓｐｐ．ａｎｄ Ｓｃｒｉｐｐｓｉｅｌｌａ ｔｒｏｃｈｏｉｄｅａ［Ｊ］． ＦＥＭＳ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ Ｅｃｏｌｏｇｙ，２００１，３７（２）：１６１— １７３． ［１０］ ＫＯＤＡＭＡ Ｍ，ＯＧＡＴＡ Ｔ，ＳＡＴＯ Ｓ．Ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ ｓａｘｉｔｏｘｉｎ［Ｊ］． Ａｇｒｉｃｌｕｔｕｒｌａ ａｎｄ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｙｒ，１９８８（５２）：１０７５—１０７７． ［１１］ ＪＡＳＴＩ Ｓ，ＳＩＥＲＡＣＫＩ Ｍ Ｅ，ＰＯＵＬＴＯＮ ＮＪ，ｅｔ ａ１． Ｐｈｙｌｏ—ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ ｓｐｅｃｉｉｆｃｉｔｙ ｏｆ ｂａｃｔｅｒｉａ ｃｌｏｓｅｌｙ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ Ａｌｅｘａｎｄｒｉｕｍ ｓｐｐ．ａｎｄ ｏｔｈｅｒ ｐｈｙｔｏｐｌａｎｋｔｏｎ［Ｊ］．Ａｐｐｌｉｅｄ ａｎｄ Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔｌａ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，２００５，７１（７）：３４８３—３４９４． ［１２］ＡＫＢＡＲ Ａ，ＣＨＥＮ Ｃ，ＺＨＵ Ｌ，ｅｔ ａ１．Ｓｐｈｉｎｇｏｍｏｎａｓ ｈｙｌｏｍｅｃｏｎｉｓ ｓｐ．ＩＩＯＶ．，ｉｓｏｌａｔｅｄ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ｓｔｅｍ ｏｆ Ｈｙｌｏｍｅｃｏｎ ｊａｐｏｎｉｃａ［Ｊ］．Ｉｎｔｅｒｕａｔｉｎａｌ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃ ａｎｄ Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎａｒｙ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，２０１５ （６５）：４０２５—４０３１． ［１３］ＮＧ Ｋ Ｋ，ＳＨＩ Ｘ，ＯＮＧ Ｓ Ｌ，ｅｔ ａ１．Ｐｙｒｏｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ６６８ 海洋渔业 ２０１６拄 ｉｎｔｅｒ—ａｃｔｉｏｎｓ ｂｅｔｗｅｅｎ ｍｉｃｒｏａｌｇａｅ ａｎｄ ｂａｃｔｅｒｉａ ｉｎ ｔｈｅ ｒｅｖｅａｌｓ ｍｉｃｒｏｂｉｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔａｙ ｐｒｏｆｉｌｅ ｉｎ ａｎａｅｒｏｂｉｃ ｂｉｏ— ｅｎｔｒａｐｐｅｄ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｒｅａｃｔｏｒ ｆｏｒ ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ ｏｍｉｃｓ ａｇｅ［Ｊ］．Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｏｐｉｎｉｏｎ ｉｎ Ｐｌａｎｔ Ｂｉｏｌｏｇｙ， ２０１５（２６）：１４７—１５３． ｗａｓｔｅｗａｔｅｒ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ［Ｊ］．Ｂｉｏｒｅｓｏｕｒｃｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ， ２０１６（２００）：１０７６—１０７９． ［２０］ ＡＭＩＮ Ｓ Ａ，ＨＭＥＬＯ Ｌ Ｒ，ＶＡＮ ＴＯＬ Ｈ Ｍ，ｅｔ ａ１． ［１４］ ＮＡＣＫＥ Ｈ，ＴＨＵＭＥＲｒ Ａ，ＷＯＬＬＨＥＲＲ Ａ，ｅｔ ａ１． Ｐｙｒｏ・・ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ－・ｂａｓｅｄ ａｓｓｅｓｓｍｅｎｔ ｏｆ ｂａｃｔｅｒｉｌ ａｃｏｍｍｕｎｉｔｙ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ａｌｏｎｇ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｍａｎａｇｅｍｅｎｔ Ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎ ａｎｄ ｓｉｇｎａｌｌｉｎｇ ｂｅｔｗｅｅｎ ａ ｃｏｓｍｏｐｏｌｉｔａｎ ｐｈｙｔｏｐｌａｎｋｔｏｎ ａｎｄ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｂａｃｔｅｒｉａ［Ｊ］．Ｎａｔｕｒｅ， ２０１５． ｔｙｐｅｓ ｉｎ Ｇｅｒｍａｎ ｆｏｒｅｓｔ ａｎｄ ｇｒａｓｓｌａｎｄ ｓｏｉｌｓ［Ｊ］．ＰｌｏＳ Ｏｎｅ，２０１１，６（２）：ｅ１７０００． ［２１］ ＫＡＬＩＳＫＹ Ｔ，ＱＵＡＫＥ Ｓ Ｒ．Ｓｉｎｇｌｅ・ｃｅｌｌ ｇｅｎｏｍｉｃｓ ［Ｊ］．Ｎａｔｕｒｅ Ｍｅｔｈｏｄｓ，２０１１，８（４）：３１１—３１４． ［２２］ ＷＡＬＫＥＲ Ａ，ＰＡＲＫＨＩＬＬ Ｊ．Ｓｉｎｇｌｅ－ｃｅｌｌ ｇｅｎｏｍｉｃｓ ［１５］ ＡＮＤＥＲＳＳＯＮ Ａ Ｆ．ＬＩＮＤＢＥＲＧ Ｍ．ＪＡＫＯＢＳＳＯＮ Ｈ，ｅｔ ａ１．Ｃｏｍｐａｒａｔｉｖｅ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｈｕｍａｎ ｇｕｔ ｍｉｃｒｏｂｉｏｔａ ｂｙ ｂａｒｃｏｄｅｄ ｐｙｒｏｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ［Ｊ］．ＰｌｏＳ Ｏｎｅ，２００８，３（７）：ｅ２８３６． ［１６］ ＲＡＭＡＮＡＮ Ｒ，ＫＩＭ Ｂ Ｈ，ＣＨＯ Ｄ Ｈ，ｅｔ ａ１．Ａｌｇａｅ— ｂａｃｔｅｒｉａ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ： Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ， ｅｃｏｌｏｇｙ ａｎｄ ｅｍｅｒｇｉｎｇ ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ［Ｊ ３．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ａｄｖａｎｃｅｓ， ２０１６，３４（１）：１４—２９． ［１７］ ＫＯＵＺＵＭＡ Ａ，ＷＡＴＡＮＡＢＥ Ｋ．Ｅｘｐｌｏｒｉｎｇ ｔｈｅ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｏｆ ａｌｇａｅ／ｂａｃｔｅｒｉａ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ［Ｊ］．Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｏｐｉｎｉｏｎ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ，２０１５（３３）：１２５—１２９． ［１８］ ＨＯＭ Ｅ Ｆ Ｙ，ＡＩＹＡＲ Ｐ，ＳＣＨＡＥＭＥ Ｄ，ｅｔ ａ１．Ａ ｃｈｅｍｉｃａｌ ｐｅｒｓｐｅｃｔｉｖｅ ｏｎ ｍｉｃｒｏａｌｇａｌ—ｍｉｃｒｏｂｉａｌ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ［Ｊ］．Ｔｒｅｎｄｓ Ｐｌａｎｔ Ｓｃｉｅｎｃｅ，２０１５，２０ （１１）：６８９—６９３． ［１９］ ＣＯＯＰＥＲ Ｍ Ｂ，ＳＭＩＴＨ Ａ Ｇ．Ｅｘｐｌｏｒｉｎｇ ｍｕｔｕａｌｉｓｔｉｃ ［Ｊ］．Ｎａｔｕｒｅ Ｒｅｖｉｅｗｓ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，２００８，６（３）： １７６—１７７． ［２３］ ＯＬＩＶＥＲ Ｊ Ｄ．Ｔｈｅ ｖｉａｂｌｅ ｂｕｔ ｎｏｎｃｕｈｕｒａｂｌｅ ｓｔａｔｅ ｉｎ ｂａｃｔｅｒｉａ［Ｊ］．Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，２００５，４３ （１）：９３—１００． ［２４］ ＰＩＮＴＯ Ｄ，ＳＡＮＴＯＳ Ｍ Ａ，ＣＨＡＭＢＥＬ Ｌ．Ｔｈｉｒｔｙ ｙｅａｒｓ ｏｆ ｖｉａｂｌｅ ｂｕｔ ｎｏｎｃｕｈｕｒａｂｌｅ ｓｔａｔｅ ｒｅｓｅａｒｃｈ：Ｕｎｓｏｌｖｅｄ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ『Ｊ］．Ｃｒｉｔｉｃａｌ Ｒｅｖｉｅｗｓ ｉｎ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｙｇ，２０ｔ５，４１（１）：６１—７６． ［２５］ ＺＨＡＮＧ Ｘ Ｌ，ＴＩＡＮ Ｘ Ｑ，ＭＡ Ｌ Ｙ，ｅｔ ａ１．Ｂｉｏｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ ｔｈｅ ｓｙｍｂｉｏｔｉｃ ｂａｃｔｅｒｉａ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｔｏｘｉｃ ｍａｒｉｎｅ ｄｉｎｏｌｆａｇｅｌｌａｔｅ Ａｌｅｘａｎｄｒｉｕｍ ｔａｍａｒｅｎｓｅ［Ｊ］．Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，２０１５，３（６）：２３— ２６． 第６期 刘巧红等：产麻痹性贝毒塔玛亚历山大藻共培养菌群的物种多样性研究 Ｓｐｅｃｉｅｓ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｓｔｕｄｙ ｏｆ ｃｏ－ｃｕｌｔｕｒｅｄ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ ｏｆ ｔｏｘｉｃ ｍａｒｉｎｅ ｄｎｏｆｌａｇｅｌｌａｔｅ Ａｌｅｘａｎｄｒｉｕｍ ｔａｍａｒｅｎｓｅ ＬＩＵ Ｑｉａｏ－ｈｏｎｇ ，ＹＵＡＮ Ｌｉ．．ｄｏｎｇ ，ＴＩＡＮ Ｘｉａｏ—ｑｉｎｇ ，ＭＡ Ｌｉ．ｙａｎ ， ＺＨＯＵ Ｈｏｎｇ－ｎｏｎｇ ，ＦＡＮ Ｃｈｅｎｇ—ｑｉ ，ＹＡＮＧ Ｘｉａｎ．ｓｈｉ ，ＹＡＮＧ Ｑｉａｏ ， ， ，ＺＨＡＮＧ Ｘｉａｏ．１ｉｎｇ （１．Ｅａｓｔ Ｃｈｉｎａ Ｓｅａ Ｆｉｓｈｅｒｉｅｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ，Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｆｉｓｈｅｒｙ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｓｈａｎｇｈａｉ ２０００９０，Ｃｈｉｎａ； ２．Ｓｈａｎｇｈａｉ Ｏｃｅａｎ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｓｈａｎｇｈａｉ ２０１ ３０６，Ｃｈｉｎａ；３．Ｉｓｔｎｉｔｕｔｅ ｆ ｏＦｉｓｈｅｒｉｅｓ Ｓｃｉｅｃｅ，Ｎａｔｎｉｏｎａｌ Ｔａｉｗａｎ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ， Ｔａｉｐｅｉ １０６１７，Ｃｈｉｎａ；４．Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ ｆＭｉｏｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，Ｏｒｅｇｏｎ Ｓｔａｔｅ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｃｏｒｖａｌｌｉｓ ９７３３３， ，ＵＳＡ） Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｐａｒａｌｙｔｉｃ ｓｈｅｌｌｉｆｓｈ ｐｏｉｓｏｎｉｎｇ（ＰＳＰ）１’ｓ ｏｎｅ ｏｆ ｔｈｅ ｆｏｕｒ ｒｅｃｏｇｎｉｚｅｄ ｓｙｎｄｒｏｍｅｓ ｏｆ ｓｈｅｌｌｉｆｓｈ ｐｏｉｓｏｎｉｎｇ， ｗｈｉｃｈ ｓｈａｒｅ ｓｏｍｅ ｃｏｍｍｏｎ ｆｅａｔｕｒｅｓ ａｎｄ ａｒｅ ｐｒｉｍａｒｉｌｙ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｂｉｖａｌｖｅ ｍｏｌｌｕｓｋｓ．Ｔｈｅｓｅ ｓｈｅｌｌｆｉｓｈ ａｒｅ ｉｌｔｅｒ ｆｅｅｄｅｒｓ ａｎｄ，ｔｈｅｒｅｆｏｒｅ，ａｃｃｕｍｕｌａｔｆｅ ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎｓ，ｃａｌｌｅｄ ｓａｘｉｔｏｘｉｎ，ｐｒｏｄｕｃｅｄ ｂｙ ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｉｃ ａｌｇａｅ，ｓｕｃｈ ａｓ ｄｉｎｏｆｌａｇｅｌｌａｔｅｓ，ｄｉａｔｏｍｓ ａｎｄ ｃｙａｎｏｂａｃｔｅｒｉａ．Ｄｉｎｏｆｌａｇｅｌｌａｔｅｓ ｏｆ ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ Ａｌｅｘａｎｄｒｉｕｍ ａｒｅ ｔｈｅ ｍｏｓｔ ｎｕｍｅｒｏｕｓ ａｎｄ ｗｉｄｅｓｐｒｅａｄ ｓａｘｉｔｏｘｉｎ ｐｒｏｄｕｃｅｒｓ ａｎｄ ａｒｅ ｒｅｓｐｏｎｓｉｂｌｅ ｆｏｒ ＰＳＰ ｂｌｏｏｍｓ ｉｎ ｓｕｂａｒｃｔｉｃ，ｔｅｍｐｅｒａｔｅ ａｎｄ ｔｒｏｐｉｃａｌ ａｒｅａｓ．Ｔｈｅ ｍａｊｏｒｉｔｙ ｏｆ ｔｏｘｉｃ ｂｌｏｏｍｓ ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ｃａｕｓｅｄ ｂｙ ｔｈｅ ｍｏｒｐｈｏｓｐｅｃｉｅｓ Ａｌｅｘａｎｄｒｉｕｍ ｃａｔｅｎｅｌｌａ， Ａｌｅｘａｎｄｒｉｕｍ ｔａｍａｒｅｎｓｅ ａｎｄ Ａｌｅｘａｎｄｒｉｕｍ ｆｕｎａｙｅｒ￣ｅ，ｗｈｉｃｈ ｔｏｇｅｔｈｅｒ ｃｏｍｐｒｉｓｅ ｔｈｅ Ａ．ｔａｍａｒｅｎｓｅ ｓｐｅｃｉｅｓ ｃｏｍｐｌｅｘ．ＰＳＰ ｔｏｘｉｎｓ ｐｒｏｄｕｃｅｄ ｂｙ ｈａｒｍｆｕｌ ａｌｇａｌ Ｍｏｏｍｓ（ＨＡＢｓ）ｃａｎ ｃａｕｓｅ ｉｍｍｅｎｓｅ ｄａｍａｇｅ ｉｎ ｍａｎｙ ａｓｐｅｃｔｓ． Ｔｈｅ ａｎｓｗｅｒｓ ｔｏ ｔｈｅ ｓｏｕｒｃｅ ｏｆ ＰＳＰ ｔｏｘｉｎｓ ａｒｅ ｓｔｉｌｌ ｕｎｓｏｌｖｅｄ．Ａｌｇａｅ—ｂａｃｔｅｒｉａ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎ ｓｔｕｄｙ ｉｓ ｔｈｅ ｋｅｙ ｔｏ ｕｎｃｏｖｅｒ ｔｈｅ ｐｒｏｄｕｃｉｎｇ ｍｅｃｈａｎｉｓｍ ｏｆ ＰＳＰ．Ｗｈｅｒｅａｓ，ｔｈｅ ｉｎｔｅｎｓｉｖｅ ｉｓｏｌａｔｉｏｎ ａｎｄ ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｂａｃｋｇｒｏｕｎｄ ａｎａｌｙｓｉｓ ｉｓ ｔｈｅ ｆｉｒｓｔ ｐｒｅｍｉｓｅ ｔｏ ｄｅｖｅｌｏｐ ｓｕｃｈ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎ ｓｔｕｄｙ．Ｃｕｒｒｅｎｔｌｙ，Ａ．ｔａｍａｒｅｎｓｅ ｉｓ ａ ｄｉｎｏｆｌａｇｅｌｌａｔｅ ｋｎｏｗｎ ｔｏ ｐｒｏｄｕｃｅ ｓａｘｉｔｏｘｉｎ，ａ ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ ｗｈｉｃｈ ｃａｕｓｅｓ ｔｈｅ ｈｕｍａｎ ｉｌｌｎｅｓｓ ｃｌｉｎｉｃａｌｌｙ ｋｎｏｗｎ ａｓ ＰＳＰ．Ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ ｐｈｙｔｏｐｌａｎｋｔｏｎ ａｒｅ ｋｎｏｗｎ ｔｏ ｐｒｏｄｕｃｅ ｓａｘｉｔｏｘｉｎ，ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ ａｔ ｌｅａｓｔ １０ ｏｔｈｅｒ ｓｐｅｃｉｅｓ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ Ａｌｅｘａｎｄｒｉｕｍ．Ａ．ｔａｍａｒｅｎｓｅ ｉｓ ａ ｗｏｒｌｄｗｉｄｅ ｄｉｎｏｆｌａｇｅｌｌａｔｅ ｋｎｏｗｎ ｔｏ ｐｒｏｄｕｃｅ ｓａｘｉｔｏｘｉｎ．Ｉｔ ｈａｓ ｓｔｒｏｎｇ ａｄａｐｔａｂｉｔｙ， ｃａｎ ｓｕｒｖｉｖｅ ｉｎ ａ ｗｉｄｅ ｒａｎｇｅ ｏｆ ｓｅａ ａｒｅａｓ．Ｉｔ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｅｓ ｆｒｏｍ Ｋｉａｏｃｈｏｗ Ｂａｙ ｔｏ Ｘｉａｍｅｎ ｓｅａ ａｒｅａ ａｎｄ Ｄａｐｅｎｇ Ｂａｙ．Ｉｔ ｈａｓ ｆｒｅｑｕｅｎｃｙ ｏｆ ＨＡＢ．Ａ．ｔａｍａｒｅｎｓｅ ｉｓ ｏｎｅ ｏｆ ｔｈｅ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔａｔｉｖｅ ｔｏｘｉｃ ｍａｒｉｎｅ ｄｉｎｏｆｌａｇｅｌｌａｔｅｓ ｃａｕｓｉｎｇ ＨＡＢ ｉｎ ｔｈｅ Ｅａｓｔ Ｃｈｉｎａ Ｓｅａ ａｒｅａ．Ｈｏｗｅｖｅｒ，ｌｉｔｔｌｅ ｉｓ ｋｎｏｗｎ ａｂｏｕｔ ｉｔｓ ｂｉｏｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ ｉｔｓ ｃｏ・ｃｕｌｔｕｒｅｄ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ ｙｅｔ．Ｔｏ ｅｌｕｃｉｄａｔｅ ｉｔｓ ｂｉｏｄｉｖｅｒｓｉｔｙ，ｔｈｅ ｓｐｅｃｉｅｓ ａｂｕｎｄａｎｃｅ ａｎｄ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ ｔｈｅ ｃｏ—ｃｕｌｔｕｒｅｄ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｔｏｘｉｃ Ａ．ｔａｍａｒｅｎｓｅ（ａｔ３＃）ｗｅｒｅ ａｎａｌｙｚｅｄ ｂｙ ｈｉｇｈ—ｔｈｒｏｕｇｈｐｕｔ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ．Ｆｒｏｍ ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ，ｔｈｅ ｑｕａｌｉｔｙ ｃｏｎｔｒｏｌ ｄａｔａ ｏｆ ｔｈｅ ｈｉｇｈ—ｔｈｒｏｕ：ｇｈｐｕｔ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ｓａｍｐｌｅ ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ｔｈａｔ ｉｔｓ ｒｅｌｉａｂｉｌｉｔｙ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｌｅｎｇｔｈ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｔｒｉｍｅｄ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｏｆ ３０１——４００ ｂｐ ｗａｓ ｏｖｅｒ ９９．９９％．Ｔｈｅ ｂｉｏｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｉｎｄｅｘｅｓ ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ ｒｉｃｈｎｅｓｓ，Ｃｈａｏ ｉｎｄｅｘ（１ ０２），Ａｃｅ ｉｎｄｅｘ（１ ０ １），ａｎｄ ｔｈｅ ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｉｎｄｅｘｅｓ ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ Ｓｈａｎｎｏｎ（２．８７），Ｓｉｍｐｓｏｎ（０．０９ １ １）ａｎｄ ｃｏｖｅｒａｇｅ（０．９９９６）ａｌｌ ｓｈｏｗｅｄ ｒｅｌａｔｉｖｅ ｒｉｃｈｎｅｓｓ ｏｆ ｔｈｅ ｓａｍｐｌｅ ｓｅｑｕｅｎｃｅｄ．Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｏｂｔａｉｎｅｄ ｂｙ ｔｈｅ ＯＵＴ ｔａｘｏｎｏｍｙ ａｎａｌｙｓｉｓ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ８７ ｓｐｅｃｉｅｓ ｃｏ—ｃｕｌｔｕｒｅｄ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｔｏｘｉｃ Ａ．ｔａｍａｒｅｎｓｅ（ａｔ３＃）ｍａｔｃｈｅｄ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｅｓｔａｂｌｉｓｈｅｄ ｄａｔａｂａｓｅ，ｉｎ ａｄｄｉｔｉｏｎ ｔｏ ａｂｏｕｔ ５％ｕｎｋｎｏｗｎ ｓｐｅｃｉｅｓ．Ｔｈｅｙ ｂｅｌｏｎｇ ｔｏ ５７ ｇｅｎｕｓ．ｉｎ ｗｈｉｃｈ ｔｈｅ ｆｉｖｅ ｄｏｍｉｎａｎｔ ｉｎｃｌｕｄｅ Ｒｈｏｄｏｂａｃｔｅｒａｃｅａｅ ｓｐ．，Ｍａｒｉｎｏｂａｃｔｅｒ ｓｐ．，Ｍｅｔｈｙｌｏｐｈａｇａ ｓｐ．，Ｎｉｔｒａｔｉｒｅｄｕｃｔｏｒ ｓｐ．ａｎｄ Ｐｈｙｃｉｓｐｈａｅｒａ ｓｐ．．Ｔｈｉｓ ｓｔｕｄｙ ｄｅｍｏｎｓｔｒａｔｅｓ ｆｏｒ ｔｈｅ ｆｉｒｓｔ ｔｉｍｅ ｔｈｅ ｂｉｏｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ ｔｈｅ ｃｏ—ｃｕｌｔｕｒｅｄ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｔｏｘｉｃ Ａ．ｔａｍａｒｅｎｓｅ（ａｔ３＃），ａｎｄ ｔｈｅ ｇｒｅａｔ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｆｏｒ ｄｉｓｃｏｖｅｒｉｎｇ ｎｅｗ ｍａｒｉｎｅ ｍｉｃｒｏｂｉａｌ ｓｐｅｃｉｅｓ ｆｒｏｍ ｔｈｉｓ ｓｐｅｃｉａｌ ｈａｂｉｔａｔ． Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ：Ａｌｅｘａｎｄｒｉｕｍ ｔａｍａｒｅｎｓｅ；ＰＳＰ ｔｏｘｉｎｓ；ｃｏ－ｃｕｌｔｕｒｅｄ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ；ｓｐｅｃｉｅｓ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ