一:目的
了解3,5-二硝基水杨酸比色法测定糖的原理 掌握总糖定量测定的操作方法 二:原理
还原糖是指含自由醛基或酮基的单糖(如葡萄糖)和某些具有还原性的双糖(如麦芽糖)。它们在碱性条件下,可变成非常活泼的烯二醇。遇氧化剂时,具有还原能力,烯二醇本身则被氧化成糖酸及其他产物。
HCOHOCOHHCOHHCOH( )nH2COH还原糖(碱)COHHCOH( )nH2COH烯二醇(碱)加热COOHOH糖酸COOHOHO2NNO2O2NNH23,5-二硝基水杨酸(黄色)3-氨基-5-硝基水杨酸(棕红色)
黄色的3,5-二硝基水杨酸(DNS)试剂与还原糖在碱性条件下共热后,自身被还原为棕红色的3-氨基-5-硝基水杨酸。在一定范围内,反应液里棕红色的深浅与还原糖的含量成正比,在波长为540nm处测定溶液的吸光度,查对标准曲线并计算,便可求得样品中还原糖的含量。
对于非还原性的双糖(如蔗糖)以及还原性很小的多糖(如淀粉),应先用酸水解法将它们彻底水解成单糖。再借助于测定还原糖的方法,可推算出总糖的含量。由于多糖水解时,在每个单糖残基上加了一分子水,因而在计算时,须扣除加入的水量,当样品里多糖含量远大于单糖含量时,则比色测定所得总糖含量应乘以
折算系数(1-
18180= 0.9),即得比较接近实际的样品中总糖含量。
三:实验材料及设备 1、材料:面粉
2、仪器:分光光度计 电子天平 沸水浴 3、器材:
刻度试管: 25mL×8 容 量 瓶: 100mL×2 锥 形 瓶: 100mL×1
移 液 管: 1mL×2 2mL×2 10mL×2 烧 杯: 250mL×1 50mL×1 滴 管: 2 洗 耳 球: 2 滤 纸: 11cm 坐 标 纸
漏斗、洗瓶、白瓷板、试管架、移液管架、试管夹、玻棒:各1 四:试剂的配制
1、葡萄糖标准液(1mg/mL)
预先将分析纯葡萄糖置80℃烘箱内约12小时。准确称取500mg葡萄糖于烧杯中,用蒸馏水溶解后,移至500mL容量瓶中,定容,摇匀(冰箱中4℃保存期约一星期)。若该溶液发生混浊和出现絮状物现象,则应弃之,重新配制。
2、3,5-二硝基水杨酸试剂(DNS试剂)
将5.0g 3,5-二硝基水杨酸溶于200mL 2N NaOH溶液中(不适宜用高温促溶),接着加入500mL含130g酒石酸钾钠的溶液,混匀。再加入5g结晶酚和5g亚硫酸钠,搅拌溶解后,定容至1000mL。暗处保存备用。 3、碘液
称取5g碘和10g碘化钾,溶于100mL水中。 4、酚酞指示剂
称取0.1g酚酞,溶于250mL 70%(V/V)的乙醇中。
5、HCl溶液(6N)
取500mL12NHCl,用水稀释至1000mL。 6、NaOH溶液(6N)
取240gNaOH,加水溶解,定容至1000mL。 五:操作步骤 1、样品中总糖的提取
(1) 取材:称取0.7g面粉,准确记录实际质量(W),放入100mL锥形瓶中。 (2) 溶解:先用几滴蒸馏水调成糊状;加入15mL蒸馏水;再加入10mL 6N HCl,
搅匀。
(3) 水解:置于沸水浴中水解30分钟。用玻璃棒取一滴水解液于白瓷板中,
加1滴碘液,检查淀粉水解程度。如显蓝色,表明未水解完全,应继续水解。如已水解完全,则不显蓝色,可以取出沸水浴中的锥形瓶,冷却。
(4) 中和:加1滴酚酞指示剂,加入10mL 6N NaOH中和至微红色。 (5) 定容:将溶液转移至100mL容量瓶(B1)中,定容。 (6) 过滤:用滤纸过滤。(注意,滤纸不能用蒸馏水湿润。)
(7) 稀释:精确吸取滤液10mL,移入另一个100mL容量瓶(B2)中,定容。(B2)
液作为总糖待测液备用。
2、标准曲线制作及样品测定
取8支25mL刻度试管,按下表所示顺序操作。
管号 操作 葡萄糖标准液(mL) 样品待测液(mL) 蒸馏水(mL) DNS试剂(mL) 反应 空白 0 标准葡萄糖浓度梯度 1 2 3 4 5 样品 Ⅰ Ⅱ 0.2 0.4 0.6 0.8 1.0 1.0 1.0 2.0 1.8 1.6 1.4 1.2 1.0 1.0 1.0 各2.0 各管混匀,沸水浴5分钟 定容 比色 记录吸光度(A540)
六:结果处理:
冷却;分别用蒸馏水定容至25mL 以0号管为空白参比,测定光度 =540nm处的吸1. 由0~5号管的数据,以葡萄糖含量(mg)为横坐标,A540为纵坐标,在坐标纸上绘制标准曲线;
—
2. 求两个样品管A540的平均值A540;
—
3. 由A540从标准曲线中求样品管中葡萄糖的含量(mg); 4. 计算你所取的生物材料中总糖的百分含量。
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